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【摘要】 目的 探讨胃癌微淋巴管的分布特点以及增殖状态。方法 应用双重免疫组织化学染色的方法,采用Podoplanin及 Ki67标记56例胃癌及12例相应正常胃组织,并检测微淋巴管及微淋巴管内皮细胞的增殖活性。结果 正常胃组织微淋巴管在黏膜固有层、黏膜下层、肌层及浆膜层均可见到,且在黏膜下层数目最多,多呈扩张状,壁薄,形态大小不一,其微淋巴管密度(LMVD)为6.93±1.32。胃癌微淋巴管在癌周及癌内数目及形态均不同,癌内微淋巴管数目少,其LMVD为5.83±3.26,并且多闭锁呈条索状;癌周微淋巴管数目多,其LMVD为11.89±3.95,且扩张呈管腔样,有时可在其中发现癌栓。癌周LMVD与癌内比较,差别有高度统计学意义(t=10.1,P<0.01);与相应正常胃组织比较,差别亦有统计学意义(t′=7.52,P<0.05)。胃癌癌周微淋巴管内皮细胞Ki67指数与癌内微淋巴管及相应正常胃组织微淋巴管相比较,差别均有统计学意义(t=6.38、6.88,P<0.05)。结论 胃癌组织中存在新生微淋巴管,癌周数目较多,且具有较高增殖活性,提示癌周微淋巴管可能是发生淋巴结转移的主要功能性淋巴管。
【关键词】 胃肿瘤 微淋巴管密度 淋巴管生成
[ABSTRACT]ObjectiveTo investigate the distribution pattern and proliferation of lymphatic vessels in gastric cancer.MethodsUsing monoclonal antibody against podoplanin, lymphatic vessel density (LMVD) in tissues of 56 cases of gastric cancer and of 12 cases of normal stomach was studied. Lymphatic endothelium was displayed by double immunohistochemicallabeling using Ki67.ResultsLymphatic vessels were easily found in the whole wall of normal stomach with LMVD 6.93±1.32, while lymphatic vessels in cancerous tissues were fewer (LMVD 5.83±3.26) with narrower lumens, lymphatic vessels in pericancerous tissues more than those of normal tissues (LMVD 11.89±3.95) with dilated lumens. The differences in LMVDs among different tissue samples were significant (P<0.01). The Ki67 labeling index of the lymphatic endothelium was found significantly higher in pericancerous tissues than that of normal gastric submucosa and in cancerous tissues (t=6.38,6.88;P<0.05).ConclusionIn pericancerous tissues, newly formed lymphatic vessels may play an important role in lymphatic metastasis.
[KEY WORDS]stomach neoplasms; lymphatic vessel density; lymphangiogenesis
淋巴道转移是胃癌最常见和最重要的转移途径,也是影响病人生存的重要因素之一。然而长期以来,由于缺乏淋巴管特异性标记物,对肿瘤淋巴管生成、分布及其增殖状态的研究一直较为薄弱。肿瘤内是否存在新生淋巴管?肿瘤细胞是通过原有淋巴管还是通过新生的淋巴管进行转移?这些问题一直存在争议。胃癌局部淋巴结转移十分常见,但其淋巴管的生成、分布及增殖状态目前仍不清楚。为此,我们采用新近发现的淋巴管特异性标记物Podoplanin来标记胃癌组织的微淋巴管,同时用Ki67显示微淋巴管内皮细胞的增殖状态,即通过免疫组织化学双重标记法,在切片上同时显示微淋巴管及处于增殖状态的微淋巴管内皮细胞,从而探讨胃癌微淋巴管的生成、分布特点及其增殖状态。
1 材料与方法
1.1 材料
选取青岛大学医学院附属医院病理科2005年1~12月手术切除的胃癌存档蜡块56例及其正常胃组织蜡块12例,每1例胃癌蜡块均包含取自于癌中央区(即癌内)及癌组织和周围正常组织交界区(即癌周)的组织。病人手术前未接受过化疗和放疗。病人中男31例,女25例;平均年龄58岁(42~75岁)。高分化腺癌8例,中分化腺癌20例,低分化腺癌28例。分期采用1987年国际抗癌联盟 (UICC)PTNM分期标准,其中Ⅰ期+Ⅱ期35例,Ⅲ期+Ⅳ期21例。根据肿瘤浸润深度,侵犯至黏膜及黏膜下层者6例,侵犯至肌层者18例,侵犯至浆膜及浆膜外者32例。根据病情进展情况,早期胃癌6例,中晚期胃癌50例。伴有淋巴结转移者27例,无淋巴结转移者29例。所有蜡块均行连续石蜡切片,厚度为5 μm,行免疫组织化学双重染色。
1.2 免疫组织化学双重染色
一抗分别为淋巴管内皮细胞特异性标记物Podoplanin和检测细胞增殖状态的抗体ki67,分别购自Angiobio公司和北京中杉试剂公司。HistastainTMDS双染试剂盒购自Zymed公司。染色步骤如下:切片脱蜡,梯度乙醇水化,使用过氧化氢灭活内源性过氧化物酶,微波修复抗原,血清封闭,加一抗(Podoplanin,工作浓度为1∶200),加生物素化二抗,加辣根过氧化物酶标记链霉卵白素,用DAB显色,显微镜下监控,蒸馏水终止反应。加双染增强剂,再次微波修复抗原,血清封闭,加第二种一抗(Ki67,工作浓度为1∶100),加生物素化二抗,加辣根过氧化物酶标记链霉卵白素,用AEC显色,显微镜下监控,自来水终止反应,苏木精复染,使用水溶性封片剂封片。以结肠癌切片作为阳性对照,以PBS代替一抗作为阴性对照。
1.3 观察指标
分别测定相应正常胃组织、胃癌癌内、癌周组织微淋巴管密度(LMVD)及微淋巴管内皮细胞Ki67指数。
1.4 结果判定
以Podoplanin染色阳性的单个内皮细胞或内皮细胞簇计为一个阳性微淋巴管。参照WEIDNER[1]报道方法进行LMVD计数。在低倍镜下先选取胃癌癌周、癌内,以及相应正常胃组织阳性染色微淋巴管最密集区即“热点”,然后在200倍视野下计数LMVD,每例计数3个视野,取均值。微淋巴管被染为棕黄色,而具有增殖活性的微淋巴管内皮细胞核及胃癌细胞核呈鲜红色。参考WULFF等[2]的方法,计算微淋巴管内皮细胞Ki67指数。
1.5 统计学处理
实验数据均以±s表示,采用SPSS 10.0统计软件进行两样本均数t检验、配对t检验。
2 结 果
2.1 胃癌及相应正常胃组织中微淋巴管的形态及分布特点
正常胃组织Podoplanin阳性染色微淋巴管在黏膜固有层、黏膜下层、肌层及浆膜层均可见到,在黏膜下层数目最多,且多呈扩张状,壁薄,形态大小不一。其LMVD为6.93±1.32。胃癌组织中也可见到明确的Podoplanin阳性染色微淋巴管。微淋巴管内未见红细胞,少数微淋巴管内可见淋巴细胞。有淋巴结转移的胃癌切片中可在微淋巴管内发现癌栓,甚至在1例苏木精伊红染色未发现淋巴结转移的胃癌微淋巴管内也发现癌栓。在胃癌组织中,癌周及癌内均有微淋巴管分布,但其数目及形态有明显的异质性,癌周微淋巴管数目多且管腔多扩张,其LMVD为11.89±3.95;而癌内微淋巴管数目少,多为闭锁的条索状,或呈狭长的裂隙状,其LMVD为5.83±3.26,癌周与癌内LMVD比较,差异有高度统计学意义(t=10.1,P<0.01),癌周与相应正常胃组织LMVD 比较,差异亦有统计学意义(t′=7.52,P<0.05)。
2.2 胃癌及相应正常胃组织微淋巴管内皮细胞增殖活性
Podoplanin和Ki67双标染色显示,胃癌微淋巴管内皮细胞核呈不同程度的Ki67表达,而相应正常胃组织微淋巴管内皮细胞无Ki67表达。癌周微淋巴管内皮细胞Ki67指数(0.04±0.02)分别与癌内(0)及相应正常胃组织(0)比较,差异有统计学意义(t=6.38、6.88,P<0.05)。
3 讨 论
许多研究已经证实血管形成对肿瘤的发生发展和转移十分重要,但是到目前为止,淋巴管形成在肿瘤转移中的研究较少,其原因是缺乏淋巴管特异性标记物。Podoplanin是一种相对分子质量为4.3万的肾小球足细胞的膜黏蛋白,参与足细胞足突的形成和塑形。先前认为它只表达于小淋巴管内皮,目前研究显示皮肤某些血管内皮细胞也可以表达Podoplanin,但是其他器官和组织的血管内皮没有发现其表达。因此,认为该蛋白是目前较为理想的淋巴管标志物[3]。对于淋巴系统而言,Podoplanin只染小的、由单层内皮衬托的微淋巴管,而有外周细胞或平滑肌细胞的大淋巴管,以及淋巴结的高内皮小静脉均不染色。超微结构显示,Podoplanin主要表达在淋巴管内皮细胞的腔面,很少表达于对腔面和细胞间隙[4]。本研究显示,Podoplanin标记的微淋 巴管中均未见红细胞,肿瘤细胞也无免疫染色,这说明Podoplanin可特异性标记微淋巴管,是研究肿瘤微淋巴管的特异性标记物。
3.1 胃癌微淋巴管的生成特点及分布特点
有研究结果表明,肿瘤内微淋巴管可能并非为肿瘤刺激新生,而是由原来存在于间质中的微淋巴管,在肿瘤细胞增殖引起间质水肿、压力升高的情况下,被动扩张而形成的[5]。近年来,随着VEGFC和VEGFD的克隆成功及淋巴管内皮细胞特异性标记物(如Podoplanin、LYVE1)的相继发现,为肿瘤淋巴管生成研究提供了较为可靠的手段。BEASLEY等[6]和SHIELDS等[7]对原发性头颈部鳞癌和黑色素瘤研究显示,这些肿瘤内确实存在淋巴管。牟江洪等[8]采用淋巴管特异性标记物Podoplanin与增殖活性相关核蛋白Ki67对96例结直肠癌双标染色显示,癌组织淋巴管密度增高,且与局部淋巴结转移显著相关,同时癌组织(尤其肿瘤浸润边缘区)淋巴管存在较多Ki67阳性内皮细胞,而在正常组织却十分少见,提示癌组织可能具有新生淋巴管。本研究结果显示,在正常胃组织的黏膜固有层、黏膜下层、肌层及浆膜层均存在微淋巴管,并且在黏膜下层微淋巴管最丰富;胃癌微淋巴管在数目及形态上均有异质性。其中癌周微淋巴管最丰富并且管腔多扩张,而癌内微淋巴管较稀疏,且多呈闭锁状或呈狭长裂隙状。进一步检测这些微淋巴管内皮细胞核的增殖活性显示,胃癌组织中癌周微淋巴管内皮细胞Ki67表达较癌内显著增强,较正常胃组织亦显著增强。胃癌癌周微淋巴管内皮细胞Ki67表达增强提示在胃癌中存在新生淋巴管,且以癌周区生成为显著。
3.2 淋巴管生成对胃癌淋巴道转移的作用
癌是通过原有的淋巴管还是通过新生的淋巴管来进行淋巴道转移?这一问题长期以来一直存在争议。就肿瘤转移而言,更重要的是肿瘤组织中的功能性淋巴管,PADERA等[9]通过染液吸收实验显示多数功能性淋巴管为肿瘤外周淋巴管,而不是肿瘤内部的淋巴管,提示在肿瘤细胞淋巴管播散中,位于肿瘤边缘的淋巴管也许更重要。PADERA进一步提出,即便肿瘤内缺乏淋巴管,肿瘤外周增生的功能性淋巴管因增加了肿瘤细胞与淋巴管接触的面积,已足以促进肿瘤发生淋巴结转移。本研究显示,在胃癌癌内微淋巴管内皮细胞Ki67指数为0,即无新生的淋巴管,而在癌周其微淋巴管内皮细胞Ki67指数为0.04±0.02,提示在癌周存在新生淋巴管。SCHOPPMAN等[10]应用Podoplanin和LYVE1双重染色方法对宫颈癌的研究也表明,在肿瘤实质中无新生的淋巴管,而在肿瘤周围却存在大量新生的微淋巴管,这与我们的研究一致。肿瘤淋巴管生成是指在肿瘤原位形成新的毛细淋巴管,由于肿瘤新生淋巴管仅由单层内皮细胞组成,内皮细胞间的连接不紧密,缺乏连续的基底膜,管壁薄,同时肿瘤组织间质液压通常增高,使连接淋巴管内皮细胞和周围结缔组织的锚丝的张力增加,造成内皮细胞间的开放连接增多,间隙增大[11]。正是这些特点使得肿瘤细胞便于进入淋巴管道,进而形成淋巴结转移和远处转移。癌周新生的淋巴管可以促进肿瘤细胞进入淋巴管,形成癌栓或癌细胞团,从而为其转移进入淋巴结打下基础。
肿瘤新生淋巴管虽然是淋巴道转移所必需的条件之一,但是仅有淋巴管生成尚不足以导致淋巴结转移。HE等[12]报道,高表达VEGFC的人肺癌N15细胞可诱导癌周淋巴管生成,但并不增加局部淋巴结转移。韩大树等[13]认为,胃癌的淋巴结转移与肿瘤大小及组织学分型均有关。另外一个原因可能是即使淋巴结已有肿瘤转移,但常规苏木精伊红染色病理切片并未发现,尤其是当淋巴结发生微转移时。这也能解释我们在实验中的结果,在1例胃癌切片中发现淋巴管内有癌栓,但此病人无淋巴结转移,此时很可能是淋巴结已发生微转移,而常规病理切片未发现而已。
综上所述,我们认为胃癌存在新生淋巴管,且多分布于癌周,并且它可以促进胃癌细胞进入新生微淋巴管,从而为胃癌发生淋巴道转移打下基础;Podoplanin是微淋巴管的有效标记物,它可以弥补苏木精伊红染色不能显示微淋巴管这一缺点,是临床工作的有效补充,能够尽早发现恶性肿瘤的淋巴道转移情况。随着研究微淋巴管生成新技术、新方法的出现,相信可以在将来有针对性地抑制胃癌癌周微淋巴管的产生,从而减少胃癌淋巴管道的转移。
【参考文献】
[1]WEIDNER N. Tumor angiogenesis: review of current applications in tumor prognostication[J]. Semin Diagn Pathol, 1993,10:302313.
[2]WULFF C, DICKSON S E, DUNCAN W C, et al. Angiogenesis in the human corpus luteum: simulated early pregnancy by HCG treatment is associated with both angiogenesis and vessel
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stabilization[J]. Hum Reprod, 2001,16:25152524.
[3]阎晓初,于冬梅,柳凤轩. 肿瘤淋巴管生成与肿瘤转移研究进展[J]. 中华病理学杂志, 2005,(34)6:370372.
[4]REIZFILHO J S, SCHMITT F C. Lymphangiogenesis in tumors what do we know[J]. Micro SC Res Tech, 2003,60:171180.
[5]胡承杰,韩德民,于振坤,等. 喉鳞癌瘤内微血管及微淋巴管形态计量研究及临床意义[J]. 耳鼻咽喉头颈外科, 2003, 10(1): 4345.
[6]BEASLEY N J, PREVOR, BANERJIS, et al. Intratumoral lymphangiogenesis and lymph node metastasis in head and neck cancer[J]. Cancer Res, 2002,62:13151320.
[7]SHIELDS J D, BORSETTI M, RIGBY H, et al. Lymphatic density and metastatic spread in human malignant melanoma[J]. Br J Cancer, 2004,90:630700.
[8]牟江洪,阎晓初,李增鹏,等. 结直肠癌淋巴管生成的特点及其临床病理意义[J]. 中华病理学杂志, 2005,34:348352.
[9]PADERA T P, KADAMBI A, TOMASO E, et al. Lymphatic metastasis in the absence of functional intratumor lymphatics[J]. Science, 2002,296:18831886.
[10]SCHOPPMANN S F, BIRNER P, STOCK J, et al. Tumorassociated macrophages express lymphatic endothelial growth factors and are related to peritumoral lymphangiogenesis [J]. Am J Pathol, 2002,161(3):947956.
[11]李建军,梁后杰. 肿瘤淋巴管生成与抗淋巴管生成治疗研究进展[J]. 中国肺癌杂志, 2005,8(1):7073.
[12]HE Y, KOZAKI K, KARPANEN T, et al. Suppression of tumor lymphangiogenesis and lymph node metastasis by blocking vascular endothelial growth factor receptor 3 signaling[J]. J Nat J Cancer Inst, 2002,94(11):819825.
[13]韩大树,窦昭峰. 胃癌临床病理特征与淋巴结转移的关系[J]. 青岛大学医学院学报, 1999,35(3):219221.